1.健康动物的选择。 2.性别辨认。 3.动物称重、编号和分组; (1)称重;称量大、小鼠体重的秤,其感应量需在0.1g以下,并经过校正。称量时注意轻抓轻放动物,避免激惹,等动物安静后记录体重读数,以g表示。 (www.med126.com/wsj/2)编号:以染色法编号。用苦味醒酒精饱和液为染料。以黄色为个位数号码,红色为十位数号码。一股以头部为1号,按顺时针依次右前肢为2号,右腰为2号,右后肢为4号,尾根部为5号,右后肢为s号,左腰为7号,左前肢为8号,后背为9号,10号为在头部染红色标记,11号在右前肢染红色和黄色标记各一,依次类推。 (3)随机分组。 4.剂量设置 由指导教师根据受试物类别,选择LD50计算方法设计剂量组。 5.受试物的配制 (1)量取受试物:固体化学物采用称量法,液体化学物可用称量法或吸量法 1)称量法:将受试物放入已知重量的容器内称重。加溶剂溶解或稀释,倾入刻度容器(如容量瓶)内,混匀,再加溶剂至刻度。算出浓度(rog/mi)备用。 2)吸量法:依设计剂量计算出应吸取液态受试物的容积,加入容量瓶中,用溶剂加至 刻度。计算公式为: X=A*V/d*1000 式中;x:应吸取受试物的容积(mD; A:设计要求的受试物浓度(mg/ml: V:容量瓶容积(m1); d;受试化学物比重。 (2)受试物的稀释 1)等浓度稀释法:将受试化学物配成一种浓度,此时各剂量组的实验动物将给予不同体积的受试物。例如受试物配成1000mg/lOml的溶液,五个剂量组的剂量分别为100、200、400、800、1600mg/kg,则各剂量组动物将依次给予1.0mi/kg、2.Omi/kg直至最高剂量组的16mi/kg。 2)等容量稀释法:按照事先设计的剂量分别稀释配制为几种不同浓度的受试物溶液,各个剂量组的动物均给予相同单位体重体积的受试化学物。如上例的情况,将受试物别配成l00mg/10ml、200mg/l0ml、400mg/10ml、800mg/10ml、1600mg/10ml 5个浓度,溶液,各剂量组动物给予受试物的体积均为l0ml/kg。 6、灌胃操作 小鼠、大鼠及豚鼠灌冒法:采用专用小鼠和大鼠灌胃针,也可自制。将头的16号注射针(适用于小鼠)或20~24号腰穿针(适用于大鼠、豚鼠)(注意事先可用锡在针尖周围焊一圆头,使其不易损伤动物的消化遭)安装在适当容积的注射器上,吸所需的受试物溶液,左手抓住动物双耳后至背部的皮肤(小鼠仅抓住耳后、颈部的皮肤,无名指、小手指和大鱼际肌将其尾根部压紧),将动物固定成垂直体位,腹部面向操作。注意使动物的上消化道固定成一直线。右手持注射器,将针头由动物口腔侧插入,避牙齿,沿咽后壁缓缓滑人食管。若遇阻力,可轻轻上下滑动探索,一旦感觉阻力消失,即深人至胃部。如遇动物挣扎,应停止进针或将针拔出,千万不能强行插入,以免穿破食,甚至误入气管,导致动物立即死亡。 一般进针深度小鼠2.5~4cm,大鼠或豚鼠4~6cm。为了验明是否已正确地插入胃部,可轻轻回抽注射器,如无气泡抽出,表明已插入胃中;如有大量气泡,则提示误插气管,应抽出重插。随后将受试物溶液注入。灌胃容量小鼠通常为o.2~1ml,大鼠1~4ml,豚鼠l~5ml。 7.中毒体征和动物死亡情况观察 染毒后注意观察毒性体征和死亡情况。高剂量组动物的死亡常很快发生,染毒后应即刻密切观察。观察和记录中毒体征及出现的时间、死亡数量和时间及死亡前的特征。根据观察情况分析中毒特点和毒作用靶器官. LD50计算:根据受试物的种类由指导教师事先确定采用何种方法(改进寇氏法、霍恩法等)进行计算,并在试验前设计剂量分组和每组动物数。选择适宜的方法求出LD50及95%的可信限范围.如毒性反应存在性别差异,应分别求出不同性别动物的LD50值。 |