失血性休克

实验性质；设计性实验

实验学时：4学时

实验分组人数：4~5人

（一)   实验目的

通过同学查阅资料，对失血性休克实验模型进行改进，自行设计失血性休克早期机体变化的观察指标和治疗方案，对同学进行科研基本素质的培养。

（二)实验过程

在实验课前3周给同学布置任务：首先向同学介绍开设设计性实验的目的，介绍科研设计的基本要素和实验设计的基本原则。要求同学通过查阅资料，了解失血性休克模型的复制方法，设计失血性休克早期机体变化的观察指标，并设计治疗方卫生资格考试网案，写出实验设计报告。

于实验前1周，教师收集实验设计报告，教研组进行集体讨论，确定实验课上的实验方案。

在实验课上，教师首先对同学的实验设计进行科学性和可行性分析，而后指导同学按教研组确定的实验方案进行实验。

 附： 家兔失血性休克

（用于设计性实验时同学参考或用于未开设设计性实验的同学使用)

实验学时：  4学时

实验分组：  4~5人

（一)  实验目的  

复制家兔失血性休克模型，观察失血性休克早期机体的变化并进行实验性治疗，分析这些变化的发生机制。

（二) 实验材料

1． 实验动物   家兔（雄性)

2． 实验仪器

（1)BL-420E+型计算机记录系统

（2)离心机， 刻度离心管

（3)婴儿秤

3．实验用药  25%乌拉坦溶液， 1%普鲁卡因溶液，肝素溶液（1250单位/毫升)，生理盐水。

4．器械  气管插管，动静脉插管，动脉夹2个，手术刀1把，止血钳10把，组织剪刀1把，线剪1把，眼科剪刀1把，剪毛剪子1把，镊子4把，注射器3个（含50或100ml 1个)，结扎线2轴。

（三)实验步骤

1．取成年家兔，称重，25%乌拉坦全麻或普鲁卡因药品数据局部麻醉。

2．背位固定动物。

3、剪去颈前部的毛，由甲状软骨下1cm处向下行正中切口，逐层分离并剪开皮下组织及颈前肌肉，分离气管，分离左侧颈总动脉和右侧颈外静脉，插入气管插管以备记录呼吸。插入导尿管以备记录尿量。

在血管插管之前，预先将动脉插管内充盈生理盐水并夹闭，测压时再打开。将中心静脉压装置的塑料管内充盈满生理盐水，排出汽泡，并夹闭其上端，将中心静脉压装置的零点调至和动物的心脏同一水平面上。

由耳缘静脉注入肝素溶液1ml/kg体质量。插入动脉插管，打开换能器一侧的螺旋夹使血压信号传入计算机。将中心静脉压插管插入右侧颈外静脉内直至接近右心房入口处，打开上端夹闭夹，液面向下移动，待液面维持在某一高度并随呼吸上下波动时，结扎固定插管，读取液面高度即为中心静脉压值。

4．将气管插管与描记系统相连。

5．观察放血前动物的呼吸、血压、中心静脉压和尿量，尿量需观察5~10分钟。由动脉插管的侧管内放血3~5 ml用以测定红细胞比容。继续放血，控制放血速度，直到血压降低到30~40mmHg时停止。观察放血后各项指标的变化，直至放血后20分钟，再次从动脉插管中放血3~5ml，用于测定放血后红细胞比容。

6．将容器中的血液掺入生理盐水，从静脉插管内推入，直到血压恢复到90mmHg以上，观察各项指标变化。

7．剪辑实验结果并打印。

附：

  红细胞比容测定方法  将血液放入带有刻度的离心管中，在天平上配平，将试管对称放入离心机中，离心速度为2500~3000转/分，离心5分钟，计算血细胞容积占血液总量的百分比。

（四) 注意事项

1．注意动物的麻醉深度，既避免动物疼痛影响实验结果，又要注意不要麻醉过深。

2．手术中尽量减少动物出血。

3．测定红细胞比容取血时，应将插管和换能器中的陈旧血放掉约2~3ml，取循环中的新鲜血液。

4．离心前一定要配平。

5．观察尿量前要排空膀胱。

6．输液前要将注射器中的空气和泡沫样液体排出，防止出现气体栓塞。

（五)思考题

1．观察失血后呼吸的变化，并分析其变化机制。

2．失血后血压逐渐回升的机制是什么？

3．失血后尿量减少的机制是什么？

4．观察失血后中心静脉压变化并分析其机制。

     （李清君)