根据标记物的不同，免疫细胞化学技术可分为免疫荧光细胞化学技术，免疫酶细胞化学技术，免疫铁蛋白技术，免疫金-银细胞化学技术，亲和免疫细胞化学技术，免疫电子显微镜技术等。近些年来，核酸分子原位杂交技术采用生物素、地高辛等非放射性物质标记探针，和免疫细胞化学技术密切结合，发展为杂交免疫细胞化学技术。不同的免疫细胞化学技术，各具有独特的试剂和方法，但其基本技术方法是相似的，都包括抗休的制备，组织材料的处理、免疫染色、对照试验、显微镜观察等步骤。还有双重和多重标记技术也有重要的用途。
一、抗体的制备和配制
（一)抗体的制备
这是免疫细胞化学技术的首要试剂，必需制备具有很高特异性和敏感性的高效价抗体，这将在本书第二章 中详述。目前国内外市场各种特异性抗体日益增多，许多实验室直接应用市售产品，现在我国自制抗体种类少，发展抗体生产十分必要。尤其要定位一种新的抗原物质，能够自制较好。
（二)抗体的配制
包括抗体贮存液和抗体使用液的配制方法。新制备或购进的是原液或冻干品，抗血清为全血清，单克隆抗体是培养上清液或腹水。
1．抗体贮存 获得新抗体后，应先根据生产厂家提供的抗体效价，将其分装，可每10μl或100μl/支分装入安瓿或0.25ml带盖塑料管中，密封。放入-20。C~40。C冰箱中保存备用，一般可保存1~2年。小量分装的抗体可1次用完，避免反复冻融而影响效价的降低。一般用前新鲜配制使用液体，稀释的抗体不能长时间保存，在4。C可存入1~3天，超过7天效价显著降低。
2．抗体使用液的配制 这是任何免疫细胞化学方法中最重要的一环，无论是一抗、二抗和各种标记抗体，用前都必须按不同免疫染色方法和抗原性强弱与抗原的多少，稀释使用的各种抗体原液，以便获得最佳免疫染色结果。
（1)抗体最佳稀释度的测定方法：用已知阳性抗原切片，进行免疫染色，将其阳性强度与背景染色强度以“+”表示，可分为++++、+++、++、+、（-)。++++为最强阳性，+++为强阳性，++为较强阳性，+为弱阳性，（-)为阴性。
①直接测定法：用于测定第一抗体的最佳稀释度，其它条件稳定可靠。将一抗稀释为1：50、1：100、1：2001：400、1：500等5个稀释度滴加在阳性抗原切片上，同时设一替代和阴性对照，结果如表1-1：
表 1-1 选择最佳稀释抗血清方法
| 一抗稀释度 | 特异性染色强度 | 非特异性背景染色度 |
| 1：50 | ++++ | ++ |
| 1：100 | ++++ | ++ |
| 1：200 | ++++ | ++ |
| 1：400 | +++ | + |
| 1：500 | ++ | （-) |
| 阴性对照 | （-) | （-) |
从表中结果可见，第一抗体稀释到1：400时阳性结果呈强阳性，背景染色减少，其最佳稀释度在1：400~500之间。再作1：420、1：440、1：460、1：480、1：500稀释后染色，找出最佳稀释度。
②棋盘（方阵)测定方法：当测定两种以上抗体的最佳配合稀释度时，必须采用此法（见表1-2)。
表1-2 两种以上抗体最佳配合稀释度选择表
| 第二抗体 | 第 一 抗 体 | |||
| 1：500 | 1：1000 | 1:2000 | 1：4000 | |
| 1：100 | ++++（++) | ++++（+) | +++（±) | +（-) |
| 1：200 | ++++（+) | +++（-) | ++（-) | ++（-) |
| 1：400 | ++（-) | +（-) | - | - |
括号内为背景染色结果
从表中可见第一抗体1：1000，第二抗体1：2000接近最佳稀释度，再将一 抗体作1：600、1：700、1：800、1：900和1：1000稀释，即可找出最佳稀释度。医学全在线www.med126.com
（2)抗体稀释液的配制：常用0.01mol/l pH7.4PBS或TBS缓冲液作抗体稀释液。可用以下方法配制专用的抗体稀释液，防止抗体效价下降，减少抗体在组织上的非特异性吸附：取0.05mol/l pH7.4 TBS100ml，加温到60。C，再加入优质明胶100mg，搅拌溶解后，冷却至室温，加入1g牛血清白蛋白，加入NaN3200mg溶解后，过滤，分装，4。C保存。
抗体的最佳稀释度由于各种抗体的效价不同，组织中抗原强弱不一，应根据不同情况作适当的调整，以取得中等阳性稀释度为佳，因其既适合于抗原性强和含量多的标本，也可用于抗原性弱的标本。
二、组织材料的处理
组织材料的处理是获得良好免疫组织化学结果的前提，必需保证要检测的细胞或组织取材新鲜，固定及时，形态保存完好，抗原物质的抗原性不丢失、不扩散和被破坏（下节 详述)。
